Бактерії знаходяться у великій кількості на всіх оточуючих людини предметах, в повітрі, на поверхні тіла, у вмісті внутрішніх органів і т. Д. Стафилококковая інвазія, що мала провідне значення до середини 60-х років, в даний час поступово замінюється і тісниться грамнегативними бактеріями ( Klebsiella pneumoniae, Enterobacter cloaque, Serratia marcescens, Е. coil, Pseudomonasaeruginosa, Proteus species), грибами і вірусами. Джерела, з яких патогенні бактерії проникають в рану, бувають екзогенними і ендогенними.
Повітря як засіб передачі інфекції (патогенний стафілокок) грає важливу роль, особливо в операційних, реанімаційних відділеннях та відділеннях інтенсивної терапії. Перенесення патогенних мікро-організмів від хворого до хворого позначається як перехресна інфекція. Зі збільшенням тривалості перебування хворого в лікарні ця небезпека зростає, тому необхідно домагатися, щоб час передопераційного обстеження і післяопераційного перебування хворого в стаціонарі було якомога менше. Операційні відділення, приміщення центральної стерилізаційної, відділення інтенсивної терапії, діагностичні кабінети, в яких можливий перехід повітряної і крапельної інфекції від хворого до хворого, від персоналу і відвідувачів до хворого і навпаки, душ і ванни слід розглядати як зони, які потребують особливо ретельного контролю.
Ендогенної вважається інфекція, що знаходиться всередині організму або на його покривах. Ендогенна інфекція потрапляє в рану або безпосередньо, або по судинним (лімфатичних або кровоносних) шляхах. Основними вогнищами ендогенної інфекції є: 1) запальні процеси покривного епітелію (фурункули, карбункули, піодермії, екземи і т. Д.); 2) вогнищева інфекція шлунково-кишкового тракту (карієс зубів, гінгівіти, холецистити, холангіти, панкреатити і т. Д.); 3) інфекція дихальних шляхів (гайморити, фронтити, трахеїти, бронхіти, запалення легенів, бронхоектази, абсцеси легенів); 4) запалення урогенітального тракту (пієліти і цистити, простатити, уретрити, сальпінгоофорити); 5) осередки невідомої (криптогенной) інфекції.
Іноді проникаючі в організм патогенні мікроби відмежовуються щільним сполучнотканинних валом. Така дрімаючі або латентна інфекція навколо сторонніх тіл, паразитичних черв'яків (ехінокок) навіть через багато років при зниженні реактивності організму може різко загостритися.
1.3. Профілактика контактної та імплантації інфекції. Стерилізація і дезінфекція.
ПРОФІЛАКТИКА контактної І імплантаційним ІНФЕКЦІЇ. Стерилізація І ДЕЗІНФЕКЦІЯ
Стерилізація досягається за допомогою фізичних і хімічних методов.К фізичних методів відносяться термічна і променева стерилізація (кип'ятінням, стерилізація парою під тиском, сухожарові стерилізація, гамма-опромінення) .Химический методи стерилізації включають в себе стерилізацію окисом етилену, обробку надуксусной кислотою, а також химиотерапевтическую обробку. Крім того, для створення асептичних умов в операційних або в ізоляторах використовують фізіотерапію повітря з метою очищення його від бактерій.
Найбільш надійними вважаються термічні способи стерилізації, променева стерилізація і стерилізація окисом етилену.
Прітерміческіх способах стерилізація проводиться або водяною парою в автоклаві при температурі 120-132С (рис. 1), або сухою парою в сухожарові стерилізатори (шафа) при температурі 170-200 ° С.
Мал. 1. П арів стерилізатор високого тиску - автоклав.
Стерилізація парою. Гаряча водяна пара служить переносником тепла. Він діє інтенсивніше, ніж гаряче повітря, так як висока теплоємність пари при конденсації переноситься на стерилізується об'єкт. Одночасно пар діє як безпосередній стерилізує агент шляхом гідратірованіем, коагуляції і гідролізу білків
Мал. 16. Схеми (а, б) парового стерилізатора (автоклава):
А - зовнішня стінка стерилізатора; Б - внутрішня стінка стерилізатора; 1 - термометр; 2 - манометр; 3 - джерело тепла; 4 - вступний кран; 5 - випускний кран.
Апарат для стерилізації паром під тиском (автоклав) складається з двох металевих циліндрів різного діаметру, вставлених один в іншій так, що між ними залишається простір, яке наповнюється водою (рис. 16). У внутрішню камеру автоклава кладуть стерилізаційні коробки з фільтром, бікси перев'язувального матеріалу або пакети з інструментами в двошарової упаковці з бязі або в пергаментному папері. Щільно загвинчують бічні двері парового стерилізатора і починають стерилізацію в заданому режимі. Паровий стерилізатор обладнаний термометром, манометром (вказує тиск пари усередині апарату) і запобіжним клапаном, який спрацьовує при наростанні надлишкового тиску.
Автоклавирование проводиться при тиску пари 1,1 + 0,1 кгс / см 2
протягом 45 + 3 хв або 2,0 ± 0,1 кгс / см 2 протягом 20 + 2 хв.
Всі предмети, які не витримують високої температури жаро-вої стерилізації і для яких температура пара не є повреж-дає, повинні стерилізувати автоклавуванням (перев'язувальний матеріал, гумові і синтетичні предмети, паперові фільтри, закриті ампули і банки з водомісткими препаратами та ін.).
Після закінчення стерилізації пар з апарату видаляють через випуск-ної кран в воду і виводять в каналізаційний стік. Відгвинчують боко-вої люк, випускають залишок пари і протягом деякого часу про-водять сушку матеріалу теплом стінок стерилізатора.
Сухожарові стерилізація. При сухожарової стерилізації (рис. 17) відбувається розігрівання стерилізуємих об'єктів. Так як гаряче повітря на відміну від водяної пари служить тільки переносником тепла, температура стерилізуємих предметів повинна досягти 170-200 ° С (180 ± 14 ° С) при експозиції 60 + 5 хв. Термічне розподіл забезпечують за рахунок надходження нагрітого повітря через спеціальний клапан в нижній частині повітряного стерилізатора, а його вихід - через верхній клапан. При підйомі повітря віддає тепло стерилізується об'єктів.
Шляхом сухожарової стерилізації можна обробляти всі термостабільні, негорючі матеріали зі скла, металу або фарфору. Сухожарові стерилізація непридатна для перев'язувального ма-териала, гуми, катетерів, виробів з паперу та пластиків. Стерилізується об'єкти, наприклад шприци, закладають чистими і сухими в холодний апарат (рис. 18). Додавання нових матеріалів і предметів для стерилізації неприпустимо. Після відключення повітряного стерилізатора необхідно дочекатися зниження температури до 80 ° С. Підключений до електромережі стерилізатор не можна відкривати, так як надходження кисню може стати причиною пожежі. Незважаючи на наявність автоматики і програмованого управління, автоклави і сухожарові стерилізатори неприпустимо залишати без нагляду персоналу.
Променева стерилізація. Цей вид стерилізації здійснюється іонізуючим випромінюванням великий енергетичної потужності, проникаючим в стерилізується матеріал на різну глибину. У практичних цілях застосовуються бета- і гамма-випромінювання. Для стерилізації гамма-випромінюванням ізотопами 60З і 137Cs доза опромінення повинна бути досить значною - не менше 2,5 мрад (25000 Гр), щоб виключити можливість залишення життєздатною Особливо зручна стерилізація гамма-випромінюванням сироваток, вакцин, біологічних тканин, лікарських препаратів, медичних виробів одноразового користування (системи для переливання крові, атравматичні голки, трахеостомические канюлі, електрокардіостимулятори і т. п.). Суттєвою перешкодою до широкого впровадження променевого методу стерилізації є небезпека проникаючої радіації для людей. Це змушує створювати громіздку систему протипроменевого захисту гамма-установок, що під силу тільки потужним спеціалізованим установам.
Можлива такжестерілізація ультразвуком. Стерилізатори наповнюють слабким антисептиком (0,05% водний розчин хлоргексидину біглюконат), в якому під впливом ультразвукових хвиль стерилізують хірургічний інструментарій, дрібні пластмасові вироби або виробляють дезінфекцію рук.
Хімічна стерилізація. Збільшення числа приладів і пристроїв, які важко стерилізувати традиційними методами, способст-вовало появи нових методів стерилізації. Під хімічної (холод-ної) розуміють стерилізацію за допомогою окису етилену або сільнодей-ствующих антисептиків (0,2% розчин надуксусной кислоти, 6% розчин перекису водню, 0,1% -тергі-ціда, 0,5% спиртовий розчин гибитана, сайдекс, потрійний розчин і ін.). Холодна стерилізація здійснюється в умовах, при кото-яких температура не перевищує температури коагуляції білка (від 45 до 60 ° С; рис. 19).
Мал. 19. Камера для нової стерилізації пароформаліновою стерилізації
Окис етилену, що надає бактерицидну дію за рахунок алкілування протеїнів бактерій, розчинна у воді, спиртах. При нормальних атмосферних умовах це безбарвний газ з неприємним ефірподобним запахом.
Застосовуються портативні газові стерилізатори з корисним об'ємом 2-3 л (НДР, УНР). При температурі 55 ° С, концентрації окису етилену 750-1000 мг / л і відповідної вологості газу успішно використовується керована програма стерилізації при невеликому надлишковому тиску, що запобігає випаровування газу. Газові стерилізатори не вимагають великого приміщення, необхідно налагодити лише вентиляцію; після стерилізації залишився газ видаляють черезвипускнікі камери в витяжні труби.
За допомогою газової стерилізації слід обробляти лише ті предмети, які не витримують стерилізацію в автоклаві або повітряному стерилізаторі. Окисом етилену стерилізують катетери зі штучних матеріалів, хірургічні рукавички, протези судин, ендоскопи, кардіостимулятори, окремі вузли респіраторів і апаратів штучного кровообігу з витримкою 6-16 ч. Вироби, простерилізовані газовим методом, застосовують після витримки в вентильованому приміщенні протягом 1-5 діб .
Перевірка якості стер лизации. Речовини і предмети вважаються стерильними, якщо вони в упакованому вигляді оброблені термічним шляхом або опроміненням і якщо ефект стерилізації підтверджений індикатором стерильності. Контроль роботи повітряних і парових стерилізаторів проводять із застосуванням хімічних тест-індикаторів і за допомогою максимальних термометрів.
Показниками якості роботи стерилізаторів є:
зміна початкового стану (колір, агрегатний стан) хімічних тест-індикаторів і відхилення температури в різних точках камери парового стерилізатора від номінального значення в межах Т ± 2 ° С.
Контроль роботи повітряних стерилізаторів здійснюється колір-ним термоиндикатором ТВК № 6 і гидрохиноном. Завдана на папір Термоіндикаторна фарба марки ТВК № 6 світло-салатового кольору при температурі 175-180 ° С стає темно-коричневою. Гідрохінон в кількості 0,3 г поміщається в скляний флакон. При температурі 170-175 ° С сіро-коричневий порошок гидрохинона перетворюється в розплавлену масу чорного кольору.
Роботу парового стерилізатора щодня контролюють тест-індикатором сечовини або бензойної кислоти з фуксином. При режимі стерилізації 132 ° С і тиску в 2 ат білий порошок сечовини пла-вітся, перетворюючись в аморфну масу того ж кольору (в бікси поміщається флакончик з сечовиною в кількості 0,3 г). При режимі стерилізації 120 ° С і тиску в 1,1 ат як індикатор застосовують бензойну кислоту з фуксином, фуксин виконує роль барвника. При температурі, близькій до пару (120 ° С), бензойна кислота з кислим фуксином розплавляються, перетворюючись в аморфну масу червоного кольору, а з основним фуксином - синього кольору. Застосування сірки для контролю ефективності стерилізації не рекомендується.
Контроль за якістю стерилізації окисом етилену проводять з використанням індікоторов у вигляді розчину гліцерину з етиленом (растворI) і броміду літію, бромкрезолового пурпурного з етанолом (розчин II).
Крім обов'язкового щоденного контролю ефективності стер-ції в стерилізаторі пробою на досягнення точки плавлення раз в тиждень (вибірково) або через 10 днів проводять бактеріологічний контроль матеріалу. Бактеріологічний контроль є самим на-надійно методом контролю стерильності. Його недоліком є про-тривалості період і трудомісткість дослідження. У зв'язку з цим в клінічній практиці широко використовуються перераховані експрес-методи.