Якість дезінфекційних заходів визначається візуальним, хімічним, бактеріологічним контролем, який здійснюють дезінфекційні станції, бактеріологічні Лаборал-рії лікувально-профілактичних установ.
При візуальному контролі, який проводить співробітник (лаборант, лікар) дезстанции, з'ясовується санітарний стан об'єкта, повнота і своєчасність проведення дезінфекційних меро-ємств.
Хімічний контроль використовують для перевірки вмісту активного хлору в препаратах і робочих розчинах, при цьому відбирають проби сухої речовини і дезінфікуючих розчинів. Відзначають дату взяття проби, коли і ким приготований дезраствор, яка концентрація вказана на етикетці. Робиться висновок про правильність приготування розчинів. Контроль доставки проб здійснює старша медична сестра. Цей метод контролю дозволяє при виявленні помилок призначити повторну дезінфекцію для їх усунення.
Бактеріологічний контроль (його здійснює лаборант або лікар дезстанции) є раптовим для персоналу, який здійснює обробку. Проби відбирають пізніше 1 години по закінченні дезінфекції. Змиви беруть з медичного інструментарію (у кількості 1% від числа шприців, голок і т. Д.), З їдальнею і чайного посуду, з предметів догляду, з рук і халатів медичного персоналу і т. Д.
Стерилізація медична - повне звільнення речовини або предмета від мікроорганізмів, т. Е. Знищення вегетативних і спорових патогенних і непатогенних форм шляхом впливу на нього фізичних або хімічних агентів.
Стерилізації піддають все вироби медичного на-значення, що стикаються з ранової поверхнею, контак-тірующіе з кров'ю або ін'єкційними препаратами, а так-же окремі види медичних інструментів, які в процесі експлуатації стикаються зі слизовою оболоч-кою і можуть викликати її пошкодження.
Обробка виробів, що підлягають стерилізації, включає три етапи:
2. Передстерилізаційна очищення,
Перший етап - дезінфекція медичних інструментів - описана в попередньому розділі.
Другий етап обробки інструментів, що підлягають стерилізації, - передстерилізаційного очищення має на меті видалення білкових, жирових, хутра-нічних забруднень і залишкових кількостей лікарських препаратів.
Предстерилизационную очистку здійснюють механізованим або ручним способами з використанням дозволених миючих засобів. Роз'ємні вироби піддають предстерилизационной очищення в розібраному вигляді і з заповненням каналів.
Механізовану очистку проводять в мийних машинах спеціального призначення: для голок, шприців, різних інструментів.
Ручним способом обробку проводять в наступній послідовності:
Промивання вироби проточною водою протягом 0,5 хв;
Замочування при повному зануренні виробу на 15 хв при 50 ° С в миючому розчині 0,5% "Біолот" або 0,5% розчині перекису водню з 0,5% одного з синтетичних миючих засобів (CMC): "Лотос", "Лотос автомат "," Астра "," Айна "," Марічка "," Прогрес ";
Миття кожного виробу в тому ж миючому розчині за допомогою ватно-марлевого тампона або йоржа протягом 0,5 хв;
Ополіскування проточною, а потім дистильованою водою;
Сушка гарячим повітрям при температурі 75-87 ° С в сушильних шафах до повного зникнення вологи.
Відомо, що перекис водню викликає корозію інструментів з корозійно-нестійких металів, тому в миючий розчин доцільно додавати інгібітор корозест ії в концентрації 1,4 г / л.
Розчин "Біолот" для замочування і миття виробів застосовують одноразово, а миючий розчин перекису водню з CMC можна використовувати протягом доби.
В даний час створені засоби, що поєднують дезінфікуючі і миючі властивості і дозволяють проводити одночасно дезінфекцію і предстерилизационную очищення інструментів в один етап ( "Лізетол АФ", "Септодор-Фор т е", "Деконекс Денталь ББ", "Дюльбак", "Гротанат "). З цією ж метою можна застосовувати "нейтральні" аноліти, одержувані на діафрагменних електрохімічних установках з раство-рів кухонної солі. Католіта, одержувані в катодних камерах установок, мають тільки миючими властивостями, їх застосовують для передстерилізаційного очищення інструментів з будь-яких матеріалів.
Контроль якості передстерилізаційного обробки проводять вибірково (1% виробів кожного найменування) шляхом постановки ряду проб: на наявність крові - за допомогою азопірамової, на наявність лужних компонентів миючих засобів - фенолфталеїнової пробою.
Азопірам, крім слідів крові, виявляє наявність на виробах залишкових кількостей пероксидаз рослинного походження, хлораміну, хлорного вапна, прального по-рошка з відбілювачем, а також іржі та кислот.
Контролю на наявність жиру піддають шприци, використані для масляних ін'єкцій, проводять пробу з Суданом III.
При позитивній пробі на кров, миючий засіб або жир всю партію контрольованих виробів піддають повторній обробці до отримання негативних результатів.
Азопірамова проба. Готують 1,0-1,5% -ний розчин солянокислого аніліну в 95% -ному етиловому спирті. Готовий розчин може зберігатися в щільно закритому флаконі в темряві в холодильнику 2 місяці, а при кімнатній температурі в темряві не більше I місяці. Температура досліджуваного вироби + 18-20 ° С. Перед постановкою проби готують робочий розчин, змішуючи рівні за обсягом кількості азопіраму і 3% -ного перекису водню. Робочий розчин повинен бути використаний протягом 1-2 годин. Нанести 1% -ний робочий розчин азопіраму на предмети, різьблення затиску, в місця зіткнення з біологічними рідинами. Проба вважається позитивною, якщо колір реактиву змінюється протягом першої хвилини.
Примітка: проба вважається позитивною, якщо колір реактиву змінився на синьо-фіолетовий, що свідчить про наявність хлорвмісних окислювачів, іржі. Рожеве забарвлення свідчить про наявність миючого засобу з лужною реакцією.
Фенолфталеїнової проба. Готують 1% -ний спиртовий розчин фенолфталеїну. Спиртовий розчин фенолфталеїну може зберігатися у флаконі з притертою пробкою в холодильнику протягом 1 місяця.
Методика постановки проб. Контрольований виріб протирають марлевою серветкою, змоченою реактивом, або дві-три краплі реактиву за допомогою піпетки наносять на виріб, на корпус інструментарію, в просвіт голки Результат оцінюється протягом двох хвилин. При негативній пробі колір реактиву не змінюється.
Примітка: ця проба свідчить про якість очищення інструментів від миючого засобу. При позитивній пробі колір реактиву зміниться від рожевого до малинового.
Стерилізацію виробів медичного призначення здійснюють наступними методами:
термічним (парові, повітряні, гласперленовий стерилізатори);
хімічним (розчини хімічних речовин, газова стерилізація);
радіаційним (установки з радіоактивним джерелом випромінювання).
Останнім часом на основі принципово нових технологій створені плазмові стерилізатори, що використовують енергію впливу потоку активованих молекул інертного газу, прискорених в електричному полі, на поверхню стерилізуємих об'єктів, а також озонові стерилізатори.
Оптимальний метод стерилізації визначають з урахуванням матеріалу, з якого складається оброблюваний виріб, його конструктивного виконання, необхідності тривалого збереження стерильності та ін.
У практиці роботи ЛПО найбільш широко застосовують термічний метод стерилізації з використанням парових і повітряних стерилізаторів.
Паровий метод стерилізації. У парових стерилізаторах обробляють хірургічне білизна, перев'язувальний матеріал, хірургічні інструменти, деталі приладів і апаратів з корозійностійких матеріалів, скла (в тому числі шприци з позначкою 200 ° С), гуми (катетери, зонди, трубки, рукавички), текстильних матеріалів.
Стерилізує агентом є насичена водяна пара під надлишковим тиском. Температурний режим стерилізації в сучасних парових стерилізаторах варіює від 126 до 141 ° С, а час стерилізації відповідно від 3 до 10 хв.
Ефективність стерилізації в паровому стерилізаторі залежить від правильного вибору упаковки, дотримання правил завантаження та щільності завантаження для вільного проходження пара.
Повітряний метод стерилізації. У повітряних стерилізаторах стерилізує агентом є сухе гаряче повітря, при цьому не відбувається зволоження упаковки і виробів і не спостерігається корозія корозійно-нестійких металів, що не ускладнюються умови збереження стерильності. Однак по ефективності впливу на мікроорганізми він поступається пару, і для забезпечення стерилізації потрібні більш високі температури. Режими стерилізації повітряним методом в стерилізаторах нового покоління характеризуються температурою від 160 до 200 ° С і часом стерилізації від 30 до 120 хв.
Повітряним методом стерилізують хірургічні та гінекологічні інструменти, деталі та вузли приладів і апаратів, в тому числі виготовлених з корозійно-нестійкий-вих матеріалів, ін'єкційні голки, шприци з позначкою 200 ° С і ін.
Газовий метод стерилізації. Стерилізацію в газових стерилізаторах здійснюють при невисоких температурах (18 - 80 ° С) із застосуванням оксиду етилену, суміші ПРО (суміш оксиду етилену і бромистого метилу в ваговому співвідношенні 1: 2,5), а також парів розчину формаліну в етиловому спирті. Вироби стерилізують в упаковці з поліетиленової плівки, пергаменту або паперу обгорткового марки. Газову стерилізат-цію як "холодного" методу використовують для термолабільних виробів медичного призначення з полімерних матеріалів (гуми, пластмаси), колючих, ріжучих хіруріі-ня інструментів, що мають дзеркальні поверхні, оптичного устаткування (ендоскопи), кардіостимуляторів, предметів одноразового користування.
Термін зберігання виробів, стерилізованих газовим методом в поліетиленовій плівці, - роки, в інших упаков-ках - 20 діб.
Метод стерилізації за допомогою розчинів хімічних засобів. Для стерилізації рекомендовані розчини: анолит нейтральний, "Біанол", Тігасепт ФФ ", глутаровий альдегід, ^ Дюльбак розчинний", "Колдспор", "Лізоформін 300", 'первомуром "(4,8%), перекис водню (6%), "Сайдекс"
У розчинах хімічних речовин обробляють інструменти з корозійностійких матеріалів, вироби зі скла, пласт-мас, металу (сплави титану), гуми на основі силіконового каучуку, в тому числі ендоскопи. Лігатурний шовний матеріал може бути стерилізований первомуром в концентрації 4,8% на відміну від первомура для обробки рук (2,4%).
Гласперленовий стерилізатори використовують для стерилізації дрібних стоматологічних інструментів. Як сте-ріліз середовища - нагріті скляні кульки.
Радіаційний метод стерилізації - провідний метод промислової стерилізації на підприємствах, що випускають стерильні вироби медичного призначення одноразового застосування: пластмасові зонди, катетери, трубки, системи для взяття і переливання крові, акушерські комплекти, перев'язувальний матеріал.
Стерилізує агентом є іонізуючі гамма-і бета-випромінювання. Енергія використовуваних для стерилізації випромінювань не викликає наведеної радіації у виробів, що стерилізуються. Термін збереження стерильності в індивідуальній упаковці з поліетиленової плівки обчислюється роками, але обмежується терміном придатності виробу до використання і вказується на упаковці.
Контроль стерилізації проводять за допомогою фізичного та хімічного методів.
Фізичний метод контролю роботи стерилізаторів здійснюють за допомогою контрольно-вимірювальних приладів, які фіксують температуру, тиск і час.
Хімічний метод полягає в використанні хімічних тестів і термохімічних індикаторів, які розміщують в стерилізаційної камері в контрольних точках при кожній закладці інструментів і матеріалів як поза упаковок, так і в стерилізаційні коробки (бікси) і всередині упаковок. При виявленні незадовільних результатів контролю завантаження вважають нестерильного.
Ефективність стерилізації контролюють бактеріологічним методом, використовуючи біотести стерилізації, що представляють собою об'єкти (флакони, фольгу та ін.), Обсіменені тест-мікроорганізмами, наприклад спорами B.stearother-mophilus або В. Ucheniformis. На підставі загибелі тест-мікроорганізмів роблять висновок про ефективність процесу.
Контроль стерильності полягає у визначенні на виробах, підданих стерилізації / тест-мікроорганізмів, здатних до розмноження.